CRISPR Cas9高效編輯基因組規則

CRISPR/Cas9系統是目前發現存在于大多數細菌與所有古生菌中的一種免疫系統，被用來識別和摧毀入侵的噬菌體和其他的病原體。在這種系統中，CRISPR是規律間隔性成簇短回文重復序列（clustered regularly interspaced short palindromic repeats）的簡稱。在過去5年里，CRISPR/Cas9作為一種有效切割DNA的工具在科學界廣受歡迎。它經改造后用于哺乳動物細胞中。本質上，這種工具是一套精簡的分子“剪刀”。

科學家們普遍認為，細胞通過隨機地插入一組核苷酸來修復CRISPR/Cas9系統誘導的DNA斷裂。這通常會破壞任何位于發生斷裂的DNA位點處的基因。

科學家們已知細胞有時利用供者DNA來修復細胞基因組中的斷裂。然而，這種供者DNA序列本身不會自我插入到細胞基因組中的空白位點上。相反，這種供者DNA的每個末端都存在著一種同源臂（homology arm）以便封閉這種切割造成的空隙。

這些同源臂由與遺傳密碼匹配的DNA的完整部分重疊的核苷酸組成。這有助這種供者DNA“粘附到”完整的DNA上。

然而，鑒于供者DNA需要比較長的同源臂（特別是當插入較長的DNA序列、單鏈DNA或環狀DNA時，而且也很難制備出較長的單鏈DNA和環狀DNA），科學家們認為利用供者DNA修復DNA斷裂是一種低效的方法。隨著科學家們在CRISPR方面積累了更多的經驗，關于供者DNA的**設計規則和供者DNA的同源臂長度的問題就出現了。

為了解答這些問題，在一項新的研究中，來自美國約翰霍普金斯大學的研究人員將不同的供者DNA組合插入到人胚胎腎細胞中，這些細胞以其生長良好的能力和經常用于癌癥研究中而為人所知。他們使用攜帶著編碼一種綠色熒光蛋白的基因的供者DNA，當這種基因成功地插入到細胞基因組中時，這種綠色熒光蛋白就會在細胞的核膜上發出綠色熒光。相關研究結果于2017年11月27日在線發表在PNAS期刊上，論文標題為“Precision genome editing using synthesis-dependent repair of Cas9-induced DNA breaks”。

約翰霍普金斯大學助理研究員Alexandre Paix發現線性DNA片段非常適合作為供者DNA，而且它們在人細胞中編輯DNA的效率比環狀DNA（這里指質粒）高2～5倍。Paix說，“線性DNA在實驗室中很容易通過PCR擴增法加以制備?！?/span>

Paix也測試了不同長度的同源臂。他發現**的同源臂長度大約為35個核苷酸（35nt），比科學家們通常使用的要短得多。

具體而言，這些研究人員發現長度為33～38nt的同源臂與長度為518nt的同源臂具有相同的編輯成功率，在**條件下產生10％～20％的編輯成功率。相反之下，當他們利用長度為15～16nt的同源臂進行測試時，這種基因插入成功率下降了一半。他們在人基因組的三個不同的位點上重復了這些結果。他們還發現新插入的DNA序列能夠長達1000nt（不包括同源臂）。

這些研究人員利用長度為57～993nt的供者DNA序列取得的編輯成功率在10%～50%。更短的供者DNA要比更長的供者DNA取得更高的編輯成功率。比如，長57nt的供者DNA、長714nt的供者DNA和長993nt的供者DNA插入到細胞基因組靶位點上的成功率分別為45.5%、23.5%和17.9%。當長度超過1000nt時，長1122nt的供者DNA和長2229nt的供者DNA具有非常低的插入成功率---大約為0.5%。

約翰霍普金斯大學醫學院基礎研究副主任Geraldine Seydoux博士說，“在序列長度比較大時，導入編輯所需的供者DNA數量是非常困難的。細胞往往會因具有這么多的DNA而窒息?！?/span>

最后，這些研究人員還發現當供者DNA距離CRISPR/Cas9切割位點不到30nt時，編輯成功率達到最高。Seydoux說，“當這種距離超過30nt時，這種插入是不可行的。”

Seydoux補充道，“這些參數應當能夠適用于科學家們試圖編輯的大多數基因。事實上，大多數實驗涉及對距離CRISPR切割位點僅兩到三個核苷酸的位置進行編輯?！?/span>

這些研究人員也測試了這種方法是否能夠在小鼠胚胎中發揮作用。通過使用具有長36nt的同源臂的PCR擴增片段，他們在87種小鼠胚胎中，成功地將一種長739nt的DNA序列（編碼一種綠色熒光蛋白）插入到27種小鼠胚胎中。

這些研究人員已正在利用這些修復規則來研究秀麗隱桿線蟲中的DNA，而且他們正在研究這些修復規則是否也適用于其他類型的人細胞。

Seydoux說，在這些修復規則被廣泛采用之前，它們應當在更多的人細胞類型和其他的有機體中接受測試。