『PCR實驗污染』的解決辦法！

　　PCR污染是每個實驗室都多多少少會遇到的問題。原因在于，PCR是非常靈敏的一項檢測，100個拷貝之內的靶序列就足以產生陽性擴增，從而容易出現DNA污染導致的假陽性。那么，怎樣遠離PCR的污染呢？

　　圖　PCR污染之一瞥

　　首先，要辨別PCR污染的來源。設立陰陽性對照，有利于檢測反應體系各成分的污染情況。尤其是設立空白對照，即包括PCR的全部組分，而不加模板DNA，這對檢測試劑中PCR產物殘留污染是非常有益的。

　　在排除試劑污染的可能性外，更換試劑后，若不久又發現試劑被污染了，則考慮可能為環境污染。環境污染的最主要原因是DNA溶液的濺出和DNA氣溶膠造成的實驗區域的污染，這尤其在PCR產物擴增區容易出現。移液器槍頭和EP管架是也較常見的污染部位。

　　如果是環境污染，還可對每個區域進行涂抹采樣和核酸提取，以最終鑒定污染的區域所在。德國Minerva Biolabs公司專門生產有DNA污染監測試劑盒（貨號181-0010和182-0010），比較方便使用。

　　對PCR的環境污染，有如下幾種治理方法：

　　1. 用常規消毒液定期在環境中噴霧消毒處理。

　　2. 稀酸處理法：對可疑器具用1mol/L鹽酸擦拭或浸泡，使殘余DNA脫嘌呤；其缺點是鹽酸對皮膚有一定的腐蝕性。

　　3. 紫外照射法：紫外波長一般選擇254/300nm，照射30分鐘至2小時。但需要注意的是，UV照射僅對500bp以上長片段有效，對短片段效果不大。

　　4. 選用商品化的DNA污染祛除劑。我們推薦的是Minerva公司的PCR CleanTM 噴霧劑、濕巾。其1分鐘即起效，方便快捷，效果顯著，可同時去除DNA和RNA。作用1分鐘后，用紙巾擦拭，即可完成對DNA污染的清除。

　　對于PCR反應液的污染，可采取以下方法：

　　1. DNase I 法：PCR混合液（未加模板和Taq聚合酶）加入0.5U DNase I，室溫反應30min后加熱滅活，然后加入模板和Taq聚合酶進行正常PCR擴增。

　　2. 內切酶法：選擇識別4個堿基的內切酶（如MspI和TaqI等），可同時選擇幾種，以克服用一種酶只能識別特定序列的缺陷，室溫作用1h后加熱滅活進行PCR。

　　3. 紫外照射法：未加模板和Taq聚合酶的PCR混合液進行紫外照射，注意事項與方法同上述UV照射法。

　　4. 尿嘧啶糖苷酶（UNG）法：用dUTP代替dTTP，使PCR產物中摻入大量dU。在再次進行PCR擴增前，用UNG處理PCR混合液即可消除PCR產物的殘留污染。由于UNG在PCR循環中的變性一步便可被滅活，因此不會影響含dU的新的PCR產物。

　　圖　UNG法預防污染

　　總之，靈敏度越高的PCR反應越容易出現PCR污染。采用適當的措施消除污染，可以避免重復實驗和浪費試劑，也使得實驗結果更加可靠而精準。

　　參考資料

　　唐艷榮，張海云，等。聚合酶鏈式反應（PCR）中主要污染源及處理方法的分析。農業開發與裝備，2017（3）：99-100

　　周榮榮，李超。日照市疾病預防控制中心PCR實驗室污染情況調查。 醫學檢驗與臨床， 2017,28（5）：61-63