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交叉應(yīng)用 | 長讀長Isoform測序+靶向質(zhì)譜策略提供了新肽預(yù)測方法

2024-06-05 16:14

長讀長的轉(zhuǎn)錄本測序已被證明可以在單核苷酸水平上直接測定轉(zhuǎn)錄異構(gòu)體,并將其作為蛋白質(zhì)的前體,經(jīng)開放閱讀框(ORF)預(yù)測,隨后編譯成潛在的全長蛋白質(zhì)異構(gòu)體序列(該方法研究人員稱之為長讀長蛋白質(zhì)基因組學(xué)/LRP)。但受限于技術(shù),多數(shù)在蛋白質(zhì)水平上仍未得到證明。一是異構(gòu)體往往豐度較低,缺乏獨特的定位肽,并伴隨進化過程的突變,在剪接連接上產(chǎn)生較少的蛋白型胰蛋白酶肽段。二是技術(shù)上采用質(zhì)譜分析蛋白質(zhì)基因組學(xué),肽的采樣不是直接的,而是半隨機的,其中使用DDADIA模式會優(yōu)先采樣最豐富的肽質(zhì)譜分析(MS1)峰。由于參考蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫的不完善,許多蛋白質(zhì)異構(gòu)體仍然是未知的。

最近,一項稱為內(nèi)標平行反應(yīng)監(jiān)測(internal standard parallel reaction monitoring, IS-PRM)靶向質(zhì)譜策略已經(jīng)證明了可對感興趣的肽進行多重且靈敏的檢測。但這種方法尚未用于確認新肽的存在。

“IS-PRM-based peptide targeting informed by long-read sequencing for alternative proteome detection”這項研究中,研究人員**展示了從蛋白質(zhì)基因組工作流程中大規(guī)模靶向檢測預(yù)測肽的方法,稱為LRP-IS-PRM。與質(zhì)譜DDA模式相比,該策略將同種異構(gòu)體的可檢測性提高了3.6倍,并鑒定出5種以前未注釋的同種異構(gòu)體,為異構(gòu)體提供了蛋白水平的證據(jù)。

結(jié)果與分析

1 基于人類細胞系建立蛋白異構(gòu)體混合物分析標準

首先,研究人員選定誘導(dǎo)多能細胞系WTC11作為復(fù)雜基質(zhì)背景下確定蛋白異構(gòu)體混合物分析標準的模型系統(tǒng),使用細胞系進行長讀長RNA測序和MS實驗,深入了解樣品特異性轉(zhuǎn)錄組和預(yù)測蛋白質(zhì)組。蛋白質(zhì)異構(gòu)體及其相關(guān)的WTC11異構(gòu)體特異性肽的選擇過程如圖1A所示。

用LRP方法(Sequel II平臺)WTC11的轉(zhuǎn)錄組進行了表征,并預(yù)測了異構(gòu)體水平的蛋白組(1A)。在WTC11樣本中,研究人員預(yù)測了來自11,755個基因的40,846個蛋白質(zhì)編碼異構(gòu)體,平均每個基因存在3.5個異構(gòu)體。并且經(jīng)SQANTI Protein評估,有24,648(56%)蛋白質(zhì)編碼異構(gòu)體是新發(fā)現(xiàn)的。經(jīng)圖1A流程選擇的肽被命名為AS192肽,由192個肽組成,對應(yīng)55個基因,具有一個主要的異構(gòu)體和至少一個次要的異構(gòu)體。

2 Tomahto可提高異構(gòu)體特異性肽的檢出率

研究人員建立了Tomahto(一種IS-PRM)作為檢測先前觀察到的靶肽的工具后,應(yīng)用Tomahto檢測WTC11樣品中的異構(gòu)體特異性肽(內(nèi)源性AS192)。實驗流程如圖1B所示:將超重型TMTpro(shTMTpro)標記的AS192合成觸發(fā)肽加入TMTpro標記的WTC11肽消化液中,將樣品分為不分離及高ph值下分離成8個部分兩種類型(3個重復(fù),圖2D)

利用Tomahto CID對分離的WTC11樣品進行分析,鑒定出192AS192靶肽中的65個,是DDA HCD鑒定數(shù)目(21個肽)3倍。另外,在未分離和分離的WTC11肽樣品中以及在不同的片段化模式下,Tomahto都返回了更高數(shù)量的確認肽鑒定(3A)WTC11中主要和次要蛋白質(zhì)同種異構(gòu)體檢測結(jié)果如圖3B所示。根據(jù)定義,與主要異構(gòu)體相比,次要異構(gòu)體的轉(zhuǎn)錄物豐度較低,理論上分析鑒定更具挑戰(zhàn)性。值得注意的是,研究人員通過MS2采集掃描檢測觸發(fā)肽(而非MS1信號)檢測到一種內(nèi)源性的異構(gòu)體特異性肽(缺乏MS1信號)EQPGSYSDAPEYLWSGTL(見圖3B箭頭)。觸發(fā)點和靶點對應(yīng)的MS1譜圖和MS2碎片圖如圖3C所示,這增加了檢測低豐度肽的靈敏度,這對于檢測低豐度次要異構(gòu)體至關(guān)重要。

3 長讀長測序提供了對蛋白質(zhì)異構(gòu)體表達的深入了解

為了標注檢測到的肽支持的異構(gòu)體,研究人員創(chuàng)建了一個UCSC基因組瀏覽器track63來可視化RNA轉(zhuǎn)錄本、它們的預(yù)測蛋白和相關(guān)的異構(gòu)體特異性肽,提供多肽鑒定的基因組和可變剪接背景(4)。值得注意的是,研究人員捕獲了與AP1S2ARFIP1CIRBPASB6CHTF8LTA4HNUP50FBXL15SF3B1FBXO44基因?qū)?yīng)的主要和次要異構(gòu)體特異性肽對(1)。除ARFIP1AP1S2外,所有主要和次要異構(gòu)體對都是僅可經(jīng)Tomahto鑒定。特別的是,從基因SF3B1中發(fā)現(xiàn)了一個編碼剪接體核心復(fù)合體的**亞基的異構(gòu)體,介導(dǎo)選擇性剪接(4B)SF3B1突變發(fā)生在惡性腫瘤中與不良患者預(yù)后相關(guān),因此SF3B1突變蛋白可能作為患者的生物標志物,這使得檢測SF3B1的特異性異構(gòu)體十分重要。綜上,通過使用Tomahto等方法,研究人員可以確認在病理或生理狀態(tài)下剪接變化引起的穩(wěn)定表達的同種異構(gòu)體。

此外,研究人員從以前未注釋的異構(gòu)體中檢測到5個肽,定義為在WTC11蛋白質(zhì)組中發(fā)現(xiàn),但在GENCODE v42參考蛋白質(zhì)組中未注釋(1)。其中,C1orf52是一個未被充分研究的蛋白質(zhì)編碼基因,其變異與多發(fā)性硬化癥的風(fēng)險有關(guān)(4C)C1orf52已被確定為一種RNA結(jié)合蛋白,在調(diào)節(jié)基因表達中起關(guān)鍵作用,這些蛋白的突變與許多疾病有關(guān)。

最后,研究人員評估了質(zhì)譜檢測AS192目標肽的能力,研究人員交叉檢查了UCSD MassIVE (https://massive.ucsd.edu)PeptideAtlas68質(zhì)譜數(shù)據(jù)庫,以尋找在之前的蛋白質(zhì)組學(xué)實驗中觀察到AS192肽的證據(jù)。共有141AS192多肽有先前MS觀察的證據(jù),而51個在這些數(shù)據(jù)庫中缺失(2)。研究人員檢測到8種以前未檢測到的肽,包括來自SF3B1的次要異構(gòu)體特異性肽(1)。檢測到以前未注釋的異構(gòu)體和肽,這些未在質(zhì)譜數(shù)據(jù)庫中報道,突出了將長讀長測序信息預(yù)測的蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫與靶向質(zhì)譜相結(jié)合的能力。

討論與展望

通過將長讀長蛋白質(zhì)基因組學(xué)與內(nèi)標平行反應(yīng)監(jiān)測(LRP-IS-PRM)相結(jié)合,研究人員可以系統(tǒng)地探索不同條件下的可變蛋白質(zhì)組。例如,廣泛存在于從細胞分化到癌癥的各種生理和病理狀態(tài)中的異構(gòu)體轉(zhuǎn)換。通過利用LRP-IS-PRM,這些差異剪接事件可以在更大范圍內(nèi)的蛋白質(zhì)異構(gòu)體水平上進行量化。這項研究**成功地將蛋白質(zhì)基因組學(xué)方法與基于觸發(fā)器的肽靶向軟件Tomahto結(jié)合起來以表征可變蛋白質(zhì)組。

PacBio HiFi測序系統(tǒng)

HiFi測序讀長能達到10-25 kb,準確度也在Q3099.9%)以上,Iso-seq方法可提供全長轉(zhuǎn)錄本異構(gòu)體,無需組裝即可表征轉(zhuǎn)錄組的完整多樣性,探索不同剪接機制生成的不同異構(gòu)體是如何導(dǎo)致健康和疾病間的表型差異:

ü 發(fā)現(xiàn)可變起始位點和終止位點,檢測可變多聚腺苷化

ü 揭示復(fù)雜可變剪接、融合事件以及轉(zhuǎn)錄通讀

ü 鑒定等位基因特異性異構(gòu)體

PacBio推出了Kinnex試劑盒!!!

Kinnex試劑盒基于MAS-Seq方法,可將較小的DNA片段連接成較長的HiFi可用文庫,提高測序通量,使長讀長 RNA -seq更具成本效益。

Kinnex 單細胞RNA試劑盒以現(xiàn)有的 MAS-Seq for Single Cell 3'試劑盒為基礎(chǔ),增加了對 10x Genomics 5'試劑盒和文庫復(fù)用的額外支持。可使測序通量提高16倍,獲得基因表達及全長isoform信息,在單細胞水平上揭示RNA異構(gòu)體多樣性。

ü Kinnex 全長RNA試劑盒可進行全長RNA 測序,與典型的Iso-seq文庫相比,其通量提高了8倍,可實現(xiàn)從5'端到3'端全長異構(gòu)體測序,準確表征剪接位點,發(fā)現(xiàn)新基因和新異構(gòu)體,鑒定融合基因,并獲得基因及異構(gòu)體read計數(shù)信息進而分析表達量。

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